КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ АЛЛЕРГИЧЕСКОЙ РЕАКЦИИ ПО ТИПУ ОСТРОЙ КРАПИВНИЦЫ И АНГИОНЕВРОТИЧЕСКОГО ОТЕКА У ПАЦИЕНТА С ХРОНИЧЕСКИМ ОПИСТОРХОЗОМ
Аннотация
Известно, что инвазия Opisthorchis felineus может приводить к развитию сенсибилизации организма человека, что проявляется в виде симптомов крапивницы. Вместе с тем остается открытым вопрос о влиянии метаболитов описторхисов на иммунный ответ в зависимости от длительности инвазии, так как информация об этих изменениях носит лишь экспериментальный характер. Пациентка, страдающая описторхозом в течение четырех лет на фоне хронически протекающего вирусного гепатита С в течение последних 10 лет, поступила с жалобами, характеризующими крапивницу и ангионевротический отек. При обследовании у пациентки выявлена лимфаденопатия надключичных и подмышечных лимфоузлов справа, признаки воспаления: увеличение скорости оседания эритроцитов и концентрации С-реактивного белка, лейкоцитоз и выраженная, стойкая эозинофилия, признаки желчного стаза и диффузного поражения печени, атрофический гастрит, ограничения в движении левого тазобедренного сустава, в котором выявлены признаки асептического некроза головки левой бедренной кости. Данный клинический случай указал также на необходимость более детального изучения механизмов формирования иммунного ответа при наличии других заболеваний, влияющих на иммунитет, в данном случае речь идет о вирусном гепатите С. Своевременная диагностика описторхоза, а также настороженность врача и самого пациента на риск развития аллергического синдрома может предопределить своевременность, превентивность и эффективность лечения, а также повлиять на благоприятность прогноза состояния пациента в будущем.
Литература
Fedorova O.S., Fedotova M.M., Zvonareva O.I. et al. Opisthorchis felineus infection, risks, and morbidity in rural Western Siberia, Russian Federation. PLoS Negl Trop Dis. 2020;14(6):e0008421. DOI: 10.1371/journal.pntd.0008421.
Zhao T.T., Feng Y.J., Doanh P.N., Sayasone S. et al. Model-based spatial-temporal mapping of opisthorchiasis in endemic countries of Southeast Asia. Elife. 2021;10:e59755. DOI: 10.7554/eLife.59755.
Petney T.N., Andrews R.H., Saijuntha W., Wenz-Mücke A. et al. The zoonotic, fish-borne liver flukes Clonorchis sinensis, Opisthorchis felineus and Opisthorchis viverrini. Int J Parasitol. 2013;43:1013–46. DOI: 10.1016/j.ijpara.2013.07.007.
Fedorova O.S., Kovshirina Y.V., Kovshirina A.E. et al. Opisthorchis felineus infection and cholangiocarcinoma in the Russian Federation: A review of medical statistics. Parasitol Int. 2017;66:365–71. 10.1016/j.parint.2016.07.010.
The State Report: Federal Center of Hygiene and Epidemiology of Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare. Moscow; 2013:116–7.
Hering-Hagenbeck S., Schuster R. A focus of opisthorchiidosis in Germany. Appl Parasitol. 1996;37:260–265.
Ogorodova L.M., Fedorova O.S., Sripa B., Mordvinov V.A. et al. Opisthorchiasis: an overlooked danger. PLoS Negl Trop Dis. 2015;9:e0003563. DOI: 10.1371/journal.pntd.0003563.
Pakharukova M.Y., Mordvinov V.A. The liver fluke Opisthorchis felineus: Biology, epidemiology and carcinogenic potential. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2015;110:28–36. DOI: 10.1093/trstmh/trv085.
Pozio E., Armignacco O., Ferri F., Gomez Morales M.A. Opisthorchis felineus, an emerging infection in Italy and its implication for the European Union. Acta Trop. 2013;126:54–62. DOI: 10.1016/j.actatropica.2013.01.
Skripova L.V., Romanenko N.A., Be’er S.A., Beznos T.V. et al. The detection of opisthorchiasis foci in Byelorussia. Med Parazitol (Mosk) n.d.:37–40.
Tselepatiotis E., Mantadakis E., Papoulis S., Vassalou E. et al. Case of Opisthorchis felineus Infestation in a Pilot from Greece. Infection. 2003;31:430–2. DOI: 10.1007/s15010-003-3225-z.
Бакштановская И.В., Степанова К.Б., Кальгина Г.А., Степанова Т.Ф. Взаимосвязи биохимических и иммунологических показателей у больных хроническим описторхозом. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2018;17:13–19.
Fedorova O.S., Fedotova M.M., Sokolova T.S. et al. Opisthorchis felineus infection prevalence in Western Siberia: A review of Russian literature. Acta Trop 2018;178:196–204. DOI: 10.1016/j.actatropica.2017.11.018.
Mairiang E., Mairiang P. Clinical manifestation of opisthorchiasis and treatment. Acta Trop. 2003;88:221–227. DOI: 10.1016/j.actatropica.2003.03.001.
Fedorova O.S., Janse J.J., Ogorodova L.M. et al. Opisthorchis felineus negatively associates with skin test reactivity in Russia — EuroPrevall-International Cooperation study. Allergy Eur J Allergy Clin Immunol. 2017;72:1096–1104. DOI: 10.1111/all.13120.
Szymczyk A., Jaworski J., Podhorecka M. The challenge of diagnosing and classifying eosinophilia and eosinophil disorders: A review. Cent Eur J Immunol. 2024;49(1):60–69. DOI: 10.5114/ceji.2024.136512.
Zignego A.L., Ferri C., Monti M., LaCivita L., Giannini C., Careccia G., Giannelli F., Pasero G., Bombardieri S., Gentilini P. Hepatitis C virus as a lymphotropic agent: evidence and pathogenetic implications. Clin Exp Rheumatol. 1995;13:S33–7.
Курлаева Л.В., Степанова Т.Ф., Степанова К.Б. и др. Иммунологические показатели у больных хроническим описторхозом при наличии мутаций в генах, ассоциированных с предрасположенностью к остеопорозу. Инфекция и иммунитет. 2023;5:923–930. DOI: 10.15789/2220- 7619-IPI-8486.
Falchi L., Verstovsek S. Eosinophilia in hematologic disorders. Immunol Allergy Clin North. 2015;35:439–452.
Gotlib J. World Health Organization-defined Eosinophilic disorders: 2014 update on diagnosis, risk stratification, and management. Am J Hematol. 2014;89:325–337.
Brigden M., Graydon C. Eosinophilia detected by automated blood cell counting in ambulatory North American outpatients. Incidence and clinical significance. Arch Pathol Lab Med. 1997;121:963–967.
Tefferi A., Patnaik M.M., Pardanani A. Eosinophilia: Secondary, clonal and idiopathic. Br J Haematol. 2006;133:468–492.
Дрынов Г.И., Ушакова Д.В. Паразитарная аллергия. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2014;1:28–32.
Allen J.E., Wynn T.A. Evolution of Th2 Immunity: A Rapid Repair Response to Tissue Destructive Pathogens. PLoS Pathog. 2011;7:e1002003. DOI: 10.1371/journal.ppat.1002003.
Сабитов А.У., Солдатов Д.А., Хаманова Ю.Б. Клинико-иммунологические особенности описторхозной инвазии. Казанский медицинский журнал. 2021;5:626–635. DOI: 10.17816/KMJ2021-626.
Peckruhn M., Elsner P., Tittelbach J. Eosinophilic dermatoses. J Dtsch Dermatol Ges. 2019;17(10):1039–1051. DOI: 10.1111/ddg.13943.
Little T.J. The Coevolution of Virulence: Tolerance in Perspective. PLoS Pathog. 2010;6:e1001006. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001006.
Medzhitov R. Disease Tolerance as a Defense Strategy. Science. 2012;335:936–941. DOI: 10.1126/science.1214935.
McSorley H.J., Maizels R.M. Helminth Infections and Host Immune Regulation. Clin Microbiol Rev. 2012;25:585–608. DOI: 10.1128/CMR.05040-11.
Yazdanbakhsh M. Th2 responses without atopy: immunoregulation in chronic helminth infections and reduced allergic disease. Trends Immunol. 2001;22:372–377. DOI: 10.1016/s1471-4906(01)01958-5.
Jittimanee J. Protective immunization of hamsters against Opisthorchis viverrini infection is associated with the reduction of TGF-β expression. Acta Trop. 2012;122:189–195. DOI: 10.1016/j.actatropica.2012.01.010.
Sripa B., Kaewkes S. Relationship between parasite-specific antibody responses and intensity of Opisthorchis viverrini infection in hamsters. Parasite Immunol. 2000;22:139–145. DOI: 10.1046/j.1365-3024.2000.00286.x.
Wongratanacheewin S. Immunodepression in hamsters experimentally infected with Opisthorchis viverrini. J Helminthol. 1987;61:151–156. DOI: 10.1017/s0022149x00009913.
Magen E. Can worms defend our hearts? Chronic helminthic infections may attenuate the development of cardiovascular diseases. Med. Hypotheses. 2005;64:904–909. DOI: 10.1016/j.mehy.2004.09.028.
Magen E. Chronic Opisthorchis felineus infection attenuates atherosclerosis — An autopsy study. Int. J. Parasitol. 2013;43:819–824. DOI: 10.1016/j.ijpara.2013.04.008.
Chaidee A., Onsurathum S., Intuyod K. et al. Co-occurrence of opisthorchiasis and diabetes exacerbates morbidity of the hepatobiliary tract disease. PLoS Negl Trop Dis. 2018;12(6):e0006611. DOI: 10.1371/journal.pntd.0006611.
Bhamarapravati N., Thammavit W., Vajrasthira S. Liver changes in hamsters infected with a liver fluke of man. Am J Trop Med Hyg. 1978;27(4):787–794.
Charoensuk L., Pinlaor P., Laothong U. et al. Bile canalicular changes and defective bile secretion in Opisthorchis viverrini-infected hamsters. Folia Parasitol (Praha). 2014;61(6):512–522. DOI: 10.14411/fp.2014.063.
Lvova M.N., Tangkawattana S., Balthaisong S., Katokhin A.V. et al. Comparative histopathology of Opisthorchis felineus and Opisthorchis viverrini in a hamster model: an implication of high pathogenicity of the European liver fluke. Parasitol Int. 2012;61(1):167–172. DOI: 10.1016/j.parint.2011.08.005.
Sripa B., Kaewkes S. Localisation of parasite antigens and inflammatory responses in experimental opisthorchiasis. Int J Parasitol. 2000;30(6):735–740. DOI: 10.1016/S0020-7519(00)00054-0.
Белобородова Э.И., Святенко И.А., Белобородова Е.В. Течение гастроэзофагеальной рефлюксной болезни на фоне хронического описторхоза. Клинические перспективы в гастроэнтерологии, гепатологии. 2011;4:26–30.
Кривошеев А.Б., Хван Л.А. Хронический описторхоз и билиарная дисфункция. Поликлиника. 2017;3:28–30.
Кузнецова В.Г., Краснова Е.И., Патурина Н.Г. Описторхоз в клинической практике врача-инфекциониста. Леч. врач. 2013;6:74–78.
Kawraemruaen C., Sermswan R.W., Wongrata-nacheewin S. Induction of regulatory T cells by Opisthor-chis viverrini. Parasite Immunol. 2016;38(11):688–697. DOI: 10.1111/pim.12358.
Logan J., Navarro S., Loukas A., Giacomin P. Hel-minth-induced regulatory T cells and suppression of allergic responses. Curr Opin Immunol. 2018;54:1–6. DOI: 10.1016/j.coi.2018.05.007.
